Troubleshooting

Troubleshooting for IP, CO-IPRIP and CHIP

免疫沉淀

产生的问题

产生问题的原因

解决办法

没有得到目的蛋白或者得到的目的蛋白太少

1.目的蛋白在样品中含量太低或者检测样品中没有目的蛋白

更换样品或者在细胞中过表达目的基因

2.加入的proteinA/G-beads太少或者与一抗的结合属性不匹配

增加proteinA/G-beads60ul/mg总蛋白;检查proteinA/G-beads与一抗的结合属性

3.抗体或者proteinA/G-beads与样品作用时间太短

正确按照protocol操作,抗体或者proteinA/G-beads与样品作用时间最短不能少于2小时

4.蛋白发生降解

尽量使用新鲜制备样品进行免疫沉淀实验;将样品至于冰上或者在冷库中操作

5.杂蛋白太多

加入抗体和proteinA/G-beads100000g离心细胞30 min以去除膜成分或者不可溶蛋白

6.目的蛋白没有溶解或者溶解不充分

针对目的蛋白的特性选择合适的裂解液

7.抗体使用浓度太低

提高抗体使用浓度

8.抗体亲和力差

更换亲和力更高的抗体

9.抗体所识别的抗原表位被相互作用蛋白所遮蔽,无法与目的蛋白相互作用

更换抗体

10.抗体选择不合适,所选择的抗体不能识别处于天然构象的蛋白

更换抗体

11.抗体或者proteinA/G-beads与样品作用时间太短

正确按照protocol操作,抗体或者proteinA/G-beads与样品作用时间最短不能少于2小时

12.洗涤条件过于剧烈

减少洗涤次数;降低洗涤缓冲液中的盐浓度或者更换更温和的去垢剂

13.检测灵敏度不够

更换检测试剂(针对WB检测)或者提高检测水平(针对质谱检测)

有非特异性相互作用或者严重的交叉反应

1.Protein A/G-beads对蛋白的非特异性吸附或者样品中有其它蛋白与Protein A/G-beads有交叉反应

ProteinA/G-beads对细胞进行预处理去除非特异性吸附蛋白,然后再加入抗体;加入2%BSAProteinA/G-beads中对beads进行预封闭

2.抗体特异性不好

更换抗体或者设立阴性对照(IgG或者其它无关抗体)

3.裂解液配方过于温和

使用条件更加剧烈的裂解液配方 (比如RIPA缓冲液)

4.洗脱条件过于温和

使用高盐(大于150nM NaCl)或者其它强表面活性剂洗脱

目的蛋白大小与IgG的重链和轻链接近,影响检测

 

使用不同种属的抗体分别进行IPWB实验

 

使用交联剂DSS将一抗与ProteinA/G-beads共价偶联后进行免疫沉淀实验


 

免疫共沉淀

产生的问题

产生问题的原因

解决办法

没有检测到与目的蛋白相互作用的蛋白或者检测得到的信号太弱

裂解液中的去垢剂浓度过高或者配方过于剧烈

降低去垢剂浓度或者更换去垢剂种类(按作用剧烈程度来区分: SDS>Trition>NP40>Digitonin>CHAPS)

受蛋白的亚细胞定位影响

重新选择裂解液配方以释放目的蛋白

蛋白与蛋白之间的相互作用太弱或者不太稳定

选择亲和力更高的抗体以捕获更多的目的蛋白从而捕获更多的相互作用蛋白;过表达提高目的蛋白的含量;选择目的蛋白或者相互作用蛋白含量高的样品进行免疫共沉淀实验

假阳性太大,有太多非特异性相互作用蛋白被检测到

抗体浓度过高

降低抗体作用浓度

抗体特异性不好

更换抗体


 

染色质免疫沉淀

产生的问题

产生问题的原因

解决办法

备注

没有检测到与目的蛋白相互作用的DMA片段或者检测到的信号太弱

染色体片段太小

超声(X-CHIP)或者酶解(N-CHIP)片段不要小于500bp

 

过度交联

严格按照protocol进行操作,多聚甲醛交联时间控制在10-15 min

多度交联会导致更多的抗原表位被破坏,影响抗体与目的蛋白的结合

用于实验的染色体量不够

不要少于25ug

 

使用N-CHIP方法去进行实验

当目的蛋白和DNA片段之间的相互作用比较弱时改用X-CHIP方法

组蛋白与DNA片段之间的作用比较强,可以使用N-CHIP方法

使用了不合适的单抗

使用多抗或者单克隆抗体群或者更换合适的单抗

多聚甲醛交联会破坏许多抗原表位使得某些单抗的作用效果会减弱

目的蛋白没有与待测DNA片段结合

使用阳性对照判断CHIP实验是否成功

 

PCR实验失败(引物设计不合理或者PCR反应条件不佳)

重新设计引物或者摸索最佳PCR条件

 

假阳性太大,有太多非特异性结合DNA片段被检测到

抗体浓度过高

降低抗体作用浓度

 

抗体特异性不好

更换抗体

 

PCR污染

重新配置PCR缓冲液